litceysel.ru
добавить свой файл
  1 2 3 4 5
Глава 3. Качественная характеристика зернового сырья, произрастающего в Центральном регионе России


Проведена оценка зернового сырья, производимого на сельскохозяйственных угодьях Центрального региона России (Орловской, Брянской областей).

Исследованные качественные показатели зерна некоторых сортов пшеницы, ржи, и тритикале, в том числе белково-протеиназного и углеводно-амилазного комплексов, показывают, что возделываемые в регионе сорта злаковых культур обладают хорошими хлебопекарными свойствами.

Однако в эпоху глобального загрязнения окружающей среды зольный состав растений рассматривается как один из существенных показателей качества, без которого невозможна оценка сырья для производства продуктов питания. Поэтому было исследовано зерновое сырье с точки зрения накопления тяжелых металлов с учетом видовых и сортовых особенностей злаковых культур (таблица 1). Содержание тяжелых металлов в зерне определяли на атомно-абсорбционном спектрофотометре фирмы Hitachi. Средние уровни содержания тяжелых металлов в зерне злаковых культур в условиях производственных посевов базового хозяйства в целом соответствуют общим закономерностям, установленным для переноса макро- и микроэлементов в звене почва - растение, и отражают существующие различия в химических свойствах и биологической роли элементов, видовых особенностях растений. Однако отмечается превышение 0,51 уровня ДУ и наличие сопоставимых с порогом фитотоксичности пределов накопления никеля, хрома, свинца и кадмия, которые определены приоритетными загрязнителями исследованных агроценозов. Именно этот факт придает особую актуальность поиску способов снижения содержания загрязнителей в зерне в процессе его переработки.


Рисунок 1 – Схема проведения исследований




Таблица 1 – Содержание тяжелых металлов в зерне районированных сортов озимой пшеницы, ржи и тритикале (средние данные за 2000-2005 г.г.), мг/кг

Сорт


Ni

Cu

Pb

Zn

Cd

Cr

Пшеница

Московская 39

0,317±0,012

2,130±0,127

0,185±0,009

22,43±1,23

0,213±0,016

0,213±0,014

Мироновская 808

0,196±0,011

2,420±0,121

0,329±0,017

23,00±1,65

0,309±0,011

0,138±0,017

Арбатка

0,368±0,014

2,010±0,133

0,481±0,014

20,82±1,59

0,274±0,018

0,173±0,007

Саратовская белая

0,552±0,009

1,810±0,113

0,432±0,018

22,05±2,080

0,457±0,008

0,221±0,011

Колос Дона

0,623±0,012

1,720±0,122

0,267±0,011

23,53±1,88

0,650±0,009

0,236±0,009

Инна


0,125±0,009

2,380±0,108

0,495±0,014

22,60±2,03

0,125±0,012

0,150±0,013

Заря

0,411±0,016

2,170±0,120

0,395±0,022

23,16±1,34

0,319±0,008

0,219±0,008

Рожь

Орловская 9

0,369±0,009

3,236±0,156

0,327±0,015

24,15±1,07

0,317±0,009

0,266±0,014

Таловская 33

0,483±0,012

3,158±0,143

0,432±0,017

23,33±2,10

0,245±0,012

0,351±0,011

Тритикале

Тальва 100

0,150±0,010

1,020±0,112

0,251±0,013

18,25±1,13

0,005±0,001

0,034±0,007

ПДК [Ягодин Б.А., 2002]

0,5

5,0

0,2

25,0

0,02


0,2

ДУ [СанПиН 2.3.2.1078-01]

-

-

0,5

-

0,1

-


Для проведения дальнейших исследований было выбрано базовое хозяйство, расположенное в Болховском районе Орловской области, пострадавшее в результате аварии на Чернобыльской АЭС, попав в зону радиоактивного загрязнения с плотностью до 15 Ки/км2. Было определено содержание тяжелых металлов и радионуклидов в зерне пшеницы, ржи и тритикале, произрастающих в базовом хозяйстве (таблица 2). Анализ осуществлялся с использованием атомно-абсорбционного спектрофотометра Hitachi и многоканального γ-анализатора Compugamma 1282 LKB-Wallac.

Таблица 2 – Содержание тяжелых металлов и радионуклидов в зерне озимой пшеницы, ржи и тритикале, выращиваемых в базовом хозяйстве (средние данные за 2004-2008 г.г.)

Элемент

Озимая пшеница

(Московская 39)

Рожь

(Орловская 9)

Тритикале

(Тальва 100)

ПДК [Ягодин Б.А., 2002]

ДУ [СанПиН 2.3.2.1078-01]

Cu, мг/кг

4,55

5,25

4,70

5,00




Zn, мг/кг

23,5

24,9

24,3


25,00




Ni, мг/кг

0,80

0,71

0,65

0,50




Cr, мг/кг

0,74

0,60

0,45

0,20




Pb, мг/кг

0,42

0,38

0,44

0,20

0,50

Cd, мг/кг

0,34

0,42

0,37

0,02

0,10

Cs137, Бк/кг

55,7

56,9

46,4




70,0

Sr90, Бк/кг

28,4

29,1

28,6




40,0

С помощью рентгеноспектрального ЭДС детектора miniCup в системе электронного сканирующего микроскопа JEOL JSM 6390 было изучено распределение химических элементов по морфологическим частям зерновки. Установлено, что элементы, входящие в состав металлоферментов, преобладают в зародыше. Элементы загрязнители в зерне пшеницы, ржи и тритикале концентрируются в основном в периферических частях зерновки, что указывает на возможность использования биокатализаторов на основе целлюлаз для модификации нативной структуры оболочек зерна и освобождения ионов химических элементов.



Глава 4. Теоретическое и практическое обоснование применения биокатализаторов на основе целлюлаз для снижения содержания токсических элементов и радионуклидов в зерне

Для модификации структуры плодовой и семенной оболочек зерна пшеницы, ржи и тритикале с целью снижения содержания токсических элементов в зерне, использовали ферментные препараты целлюлолитического действия: отечественный промышленный препарат серии «Целловиридин Г20х» (продуцент Trichoderma reesei), содержащий комплекс ферментов целлобиогидролазу, β-глюканазу, ксиланазу (целлюлазная активность – 3522 ед/г, ксиланазная – 728 ед/г) и лабораторный препарат на основе фитазы F 4.2B (P-215) FD-UF (ИБФМ РАН г. Пущино), продуцент Penicillium canescens, в состав которого входят целлобиогидролаза, β-глюканаза, ксиланаза и фитаза (фитазная активность 12008 ед/г, ксиланазная – 803 ед/г), а также препараты от зарубежных производителей ферментов: фирмы Novozymes: Pentopan 500 BG: продуцент Humicola insolens, содержит ксиланазу (ксиланазная активность 2700 ед/г) и Fungamyl Super AX, в состав которого входят ксиланаза и α-амилаза продуцент Aspergillus oryzae (ксиланазная активность 2500 ед/г); препарат фирмы Quest – Biobake – 721, содержащий ферменты ксиланазу (ксиланазная активность 721 ед/г).

Ферментные препараты применяли на стадии замачивания зерна. Процесс проводили при рН 4,5 и температуре 50°С в условиях термостата. Выбор параметров замачивания обусловлен оптимальными температурой и рН для действия ферментов, входящих в состав ферментных комплексов. Для поддержания рН среды использовали цитратный буфер. Рациональные дозы биокатализаторов на основе целлюлаз, применяемых при замачивании для снижения токсичных элементов свинца и кадмия, нормируемых СанПиНом, в зерне злаковых культур были определены в результате математической обработки экспериментальных данных. Для получения регрессионных зависимостей с полями дозы ферментных препаратов и продолжительность замачивания зерновой массы проведено изучение изменения показателей содержания свинца и кадмия в зерне пшеницы, ржи и тритикале. На рисунке 2 представлены графики поверхностей, полученные при обработке экспериментальных данных по влиянию препарата Целловиридин Г20х на содержание свинца и кадмия в зерне пшеницы при разной продолжительности замачивания.




z = -0,078xy + 0,00003981y2 – 0,00373y + z = -0,352xy + 0,0008621y2 - 0,0091y + 0,662

0,305 +0,201x - 1,866x2 +2,452x - 27,166x2

1 2

Рисунок 2 - Влияние концентрации препарата Целловиридин Г20х и продолжительности замачивания на содержание свинца (1) и кадмия (2) в зерне пшеницы


Показатели содержания тяжелых металлов коррелировали с величиной доз ферментных препаратов. Рациональные дозировки для различных препаратов составили 0,004-0,09% от массы сухих веществ зерна пшеницы и 0,008-0,18% от массы сухих веществ зерна ржи. Для тритикале использовали только препарат Целловиридин Г20х, рациональной дозировкой которого являлась 0,09% от массы сухих веществ зерна.

Для определения влияния различных ферментных препаратов целлюлолитического действия на изменение содержания никеля, хрома и радионуклидов Cs137 и Sr90 в зерне пшеницы и ржи в процессе замачивания проводили исследование динамики их содержания в субстратах. Отмечены общие закономерности в динамике содержания изучаемых элементов. С первых часов замачивания содержание загрязнителей начинает стремительно падать и к 12 часам замачивания зерна этот процесс замедляется. В таблице 3 приведены результаты исследования влияния биокатализаторов на основе целлюлаз на снижение содержания тяжелых металлов в зерне на примере зерна пшеницы сорта Московская 39.

Оболочки зерна хлебных злаков обладают пониженной гигроскопичностью. Динамику поглощения воды зерном пшеницы, ржи и тритикале определяет состав ферментных комплексов препаратов и удельный расход воды при замачивании (гидромодуль). Установлено, что увеличение соотношения зерно:вода более 1:1,5, не приводит к значительному изменению динамики влажности зерна при замачивании.


Экспериментально установлена рациональная продолжительность замачивания в оптимальных условиях (температура 50°С, рН 4,5), которая для зерна пшеницы и тритикале составила 12, для зерна ржи – 16 часов для всех используемых биокатализаторов. За этот период времени влажность зерна достигает 40% и более, что необходимо для получения зерновой массы, способной подвергаться диспергированию и позволит использовать зерновое сырье для производства хлебобулочных изделий.


Таблица 3 – Влияние ферментных препаратов целлюлолитического действия на содержание тяжелых металлов в зерне пшеницы

Вариант опыта

Содержание элементов в зерне, мг/кг

Cd

Pb

Ni

Zn

Cu

Cr

Без промывания водой

Контроль

(вода без ферментных препаратов))

0,653±

0,010

0,259±

0,013

0,454±

0,012

23,230±

0,141

2,133±

0,026

0,211±

0,012

Целловиридин Г20х

0,225±

0,015

0,167±

0,011

0,333±

0,014

18,812±

0,247

1,721±

0,019


0,115±

0,007

Biobake 721

0,359±

0,018

0,206±

0,014

0,364±

0,017

20,823±

0,156

1,864±

0,022

0,143±

0,09

Pentopan 500 BG

0,438±

0,011

0,243±

0,016

0,403±

0,016

22,607±

0,221

2,097±

0,033

0,165±

0,013

Fungamyl Super AX

0,416±

0,013

0,230±

0,013

0,416±

0,013

21,984±

0,219

1,996±

0,021

0,184±

0,011

Препарат на основе фитазы

0,204±

0,010

0,154±

0,013

0,327±

0,012

20,036±

0,179

1,804±

0,028

0,118±

0,007

После промывания водой

Контроль

(вода без ферментных препаратов)

0,529±


0,021


0,222±

0,012

0,329±

0,015

23,006±

0,050

2,011±

0,030

0,202±

0,008

Целловиридин Г20х

0,078±

0,014

0,067±

0,013

0,101±

0,012

18,133±

0,032

1,422±

0,019

0,111±

0,007

Biobake 721

0,196±

0,012

0,121±

0,011

0,110±

0,014

20,232±

0,054

1,736±

0,023

0,135±

0,012

Pentopan 500 BG

0,336±

0,019

0,201±

0,014

0,121±

0,015

22,127±

0,043

1,936±

0,017

0,148±

0,010

Fungamyl Super AX

0,309±

0,018

0,187±

0,012

0,119±

0,013

21,571±

0,049

1,830±

0,020

0,163±

0,013

Препарат на основе фитазы


0,097±

0,011

0,060±

0,007

0,102±

0,011

19,384±

0,030

1,589±

0,034

0,115±

0,008


Механизм защиты растений от поступления высокого уровня тяжелых металлов в клетки и ткани заключается в связывании большей части металлов клеточной стенкой. В литературе приводятся данные о том, что в случае повреждения клеточных мембран наблюдается пассивная утечка соединений металлов из различных компартментов клетки. Низкие значения рН, а также присутствие экзаметаболитов и комплексонов играют важную роль в стратегии снижения внутриклеточного уровня токсических элементов [Parry, Hayward, 1973; Mierle, Stokes, 1976; Дмитриева и др., 2003].

С помощью электронного сканирующего микроскопа JEOL JSM 6390, используя увеличение х700, была рассмотрена микроструктура поверхности зерновки хлебных злаков на продольных срезах нативного зерна, а также зерна, обработанного водой и ферментными препаратами целлюлолитического действия при оптимальных параметрах замачивания (рисунок 3). Изменения, происходящие в микроструктуре зерна, определяются составом ферментного комплекса препарата и видовыми особенностями зерновых культур.




Рисунок 3 – Микроструктура поверхности зерна пшеницы под действием ферментных препаратов целлюлолитического действия ( увеличение х700).

1 - зерно, замоченное в воде без ферментных препаратов (контроль);

2 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Целловиридин Г20х;

3 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Biobake 721;

4 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Pentopan 500 BG;


5 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Fungamil Super AX;

6 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата на основе фитазы;

7 – исходное зерно без замачивания.


Поверхность нативного зерна пшеницы имеет характерный рельеф первого порядка, представляющий собой параллельные тяжи целлюлозных фибрилл различной толщины и извилистости, покрытые эпидермальными производными полисахаридных компонентов матрикса. Под действием воды и биокатализаторов на основе целлюлаз произошло изменение рельефа поверхности зерна, которое выражено в виде оголенных пучков длинных практически неповрежденных волокон, произошло разрушение межфибриллярных поперечных сшивок, построенных из молекул гемицеллюлоз. На поверхности образовались ячейки шириной 8-20 мкм, ограниченные крупными кутикулярными тяжами, преобладает параллельная текстура микрофибрилл. Оголившиеся межфибриллярные паракристаллические участки становятся доступными для воды, коллоидов и хелатов.

В ходе ферментативного гидролиза изменяются физико-химические параметры субстратов. Одним из критериев реакционной способности целлюлозосодержащего сырья является выход восстанавливающих сахаров в процессе гидролиза (рисунок 4). Концентрация восстанавливающих сахаров в зерне пшеницы через 12 часов гидролиза составляет 0,92-1,47%, ржи – 1,11-1,57%. тритикале – 1,95%.


Рисунок 4 - Динамика образования

восстанавливающих сахаров в процессе замачивания зерна

пшеницы с ферментными препаратами

Для оценки деструкции целлюлозосодержащего комплекса периферических частей зерновки с помощью жидкостного хроматографа Agilent 1100 был определен состав низкомолекулярных продуктов гидролиза в зерне пшеницы и тритикале после 12 часового гидролиза и зерне ржи после 16 часового замачивания с биокатализаторами на основе целлюлаз. Разделение смеси сахаров проводили на анионообменной колонке с привитой аминофазой с последующим электрохимическим детектированием. В таблице 4 представлены результаты анализа продуктов гидролиза некрахмальных полисахаридов на примере зерна пшеницы.


Изменение матрикса клеточных стенок в периферических частях зерновки злаковых культур под действием воды и биокатализаторов на основе целлюлаз сопровождается нарушением химической структуры образуемой системы. Происходит гидролиз гликозидных связей в молекулах полисахаридов, частично разрушаются узлы каркаса матрикса, образуются вещества с низкой молекулярной массой и высокой растворимостью. В экстрактах зерна злаковых культур увеличивается количество мальтозы на 17,0 - 38,5 % по сравнению с нативным зерном. Наблюдается тенденция к увеличению количества неидентифицированных сахаров.

Таблица 4 – Углеводный состав зерна пшеницы, г/л

Сахар

Зерно без

замачивания

Зерно после замачивания в

воде



растворе ферментного препарата

Целловиридин Г20х

Biobake 721

Pentopan 500 BG

Fungamil Super AX

На основе фитазы

арабиноза

0,00

0,01

0,01

0,01

0,02

0,02

0,01

галактоза

0,00

0,00

0,00

0,00

0,00


0,00

0,00

глюкоза

0,34

0,39

0,38

0,36

0,43

0,49

0,36

сахароза

0,11

0,13

0,13

0,12

0,11

0,15

0,13

ксилоза

0,00

0,00

0,02

0,00

0,00

0,00

0,02

фруктоза

0,30

0,22

0,23

0,24

0,24

0,27

0,23

раффиноза

0,01

0,01

0,04

0,02

0,02

0,01

0,03

неидентифициро-ванный сахар

0,02

0,03

0,05

0,03

0,03

0,03

0,04


целлобиоза

0,00

0,00

0,00

0,00

0,00

0,00

0,00

мальтоза

1,76

1,97

2,06

2,12

2,10

2,13

2,10

Сумма сахаров

2,43

2,76

2,92

2,90

2,95

3,10

2,91


Для оценки характера изменения микроструктуры и морфологии плодовых оболочек зерна злаковых культур готовили поперечные срезы на примере зерна пшеницы сорта Московская 39, которые изучали с помощью электронной сканирующей микроскопии с увеличением х4000 (рисунок 5).

Под действием биокатализаторов на основе целлюлаз в плодовых облочках образуются продольные разрывы, обнаруживаются оголенные цепи полисахаридов, на концах волокон – фибрилляция. Волокна изгибаются, обрастают бахромой, которая, видимо, образуется из разрушенных внешних слоев соседних волокон микрофибрилл. Таким образом, наблюдается деструктуризация некрахмальных полимеров покровов семени, которая может привести к десорбции ионов металлов и активной миграции их за пределы зерновки.

Важным механизмом детоксикации тяжелых металлов в цитоплазме является их хелатирование – образование комплексных соединений органических веществ с металлами. При этом лигандами могут быть органические кислоты, аминокислоты, фитохелатины и металлотионеины, глютатион, никотинамид [Барсукова В.С., 1987; Taylor G.J., 1987; Nordberg G., 1996].


Указанные соединения в растениях играют роль транспортных биокомплексов (ионофоров) выполняющих функцию поддержания клеточного гомеостаза и транспорта биогенных и токсических элементов. В водной фазе самыми распространенными лигандами являются органические кислоты и молекулы воды, поэтому гидролиз и комплексообразование – наиболее обычные реакции. Часть тяжелых металлов, адсорбированных на клеточных стенках или связанных хелатирующими агентами, легко может быть отмыта. При использовании комплексонов образуются гидрофильные каналы, что приводит к утечке через образовавшиеся поры низкомолекулярных веществ из цитоплазмы [Wallace A., 1979].



Рисунок 5 – Изменение микроструктуры плодовой оболочки зерна пшеницы под действием ферментных препаратов целлюлолитического действия (увеличение х4000).

1 - зерно, замоченное в воде без ферментных препаратов (контроль);

2 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Целловиридин Г20х;

3 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Biobake 721;

4 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Pentopan 500 BG;

5 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата Fungamil Super AX;

6 – зерно, замоченное в растворе ферментного препарата на основе фитазы;

7 – исходное зерно без замачивания.

С помощью электронного сканирующего микроскопа JEOL JSM 6390 с увеличением х6000-х13000 выполнены фотографии поверхности плодовых оболочек зерна пшеницы. На микрофотографиях хорошо просматриваются поры в оболочках. После замачивания зерна пшеницы в воде в течение 12 часов при температуре 50°С размер пор в плодовых оболочках составляет 132,0-253,6 нм.

При обработке в процессе замачивания зерна пшеницы буферными растворами рН 4,5 размеры пор возрастают и составляют 321,3-555,5 нм, что позволяет ускорить процессы проникновения комплексонов через измененные поры, образования подвижных биокомплексов и транспорта токсических элементов.


Роль хелатирующего агента в проведенных исследованиях выполняет лимонная кислота, которая входит в состав цитратного буфера и используется для поддержания рН на оптимальном для действия применяемых ферментных препаратов уровне 4,5. Под влиянием биокатализаторов на основе целлюлаз полисахариды, составляющие матрикс клеточных стенок модифицируются, нарушается система нативных межмолекулярных связей между основными структурными компонентами полисахаридного комплекса, происходит процесс мацерации структур оболочек и частичная фрагментация самих полимеров. Это обеспечивает разрушение межклеточного вещества, приводя к разъединению клеток, солюбилизации продуктов гидролиза и глубокому проникновению хелатора через измененные поры. Процесс сопровождается десорбцией ионов тяжелых металлов, связанных с молекулами некрахмальных полисахаридов.

Экспериментальными исследованиями промывных вод и морфологических частей зерновки после промывания проточной водой доказано, что происходит сдвиг равновесия концентрации ионов изучаемых химических элементов в сторону жидкой фазы. Промывание зерна проточной водой приводит к дальнейшему снижению содержания токсичных элементов в зерновке. Так, при применении ферментного препарата Целловиридин Г20х содержание свинца в зерне пшеницы после промывания снизилось по сравнению с контролем без ферментных препаратов и без промывания на 88,1 %, кадмия – на 74,2, никеля – на 87,8, цинка – на 22,0, меди – на 33,4 и хрома – на 47,4 %, в зерне ржи – на 60,2, 64,9, 62,1, 12,9, 28,9, 27,9 % , в зерне тритикале на 70,8, 63,3, 64,1, 9,3, 9,6 и 51,2% соответственно. Промывание зерна привело к выносу ионов с промывными водами за пределы твердой фазы.

Ферментные препараты Целловиридин Г20х и на основе фитазы практически в одинаковой степени способствуют снижению содержания изучаемых химических элементов в зерне злаковых культур после замачивания и промывания водой. Препараты различаются составом ферментных комплексов и активностью их компонентов. С целью изучения вклада отдельных ферментов, входящих в состав комплексов ферментных препаратов, в процесс десорбции металлов был проведен опыт с использованием для замачивания зерна пшеницы и ржи экспериментальных лабораторных образцов ферментных препаратов, полученных на основе грибной культуры Penicillium canescens: EgP6 ферментный комплекс представлен фитазой и β-глюканазой; фитаза F17.2 ферментный комплекс представлен фитазой и ксиланазой и Xyl 23 содержит фермент ксиланазу (лаборатория физико-химической биотрансформации полимеров химический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова). Наибольшее снижение металлов происходит при использовании для замачивания зерна препарата на основе фитазы, в состав которого входят ферменты: целлобиогидролаза, β-глюканаза, ксиланаза и фитаза. Препарат EgP6 (1108), содержащий β-глюканазу и фитазу, также был эффективен при снижении содержания исследуемых химических элементов в зерне. Вероятно в процессе десорбции элементов основная роль принадлежит ферменту β-глюканаза в комплексе с целлобиогидролазой. Эндоглюканазам принадлежит важнейшая роль в действии полиферментных систем, поскольку они первыми атакуют целлюлозу и концентрируются сначала на участках полимера с дефектами структуры и отщепляют целлоолигосахариды. Целлобиогидролазы отщепляют целлобиозу и глюкозу в процессе гидролиза целлюлозы и целлоолигосахаридов. Ферменты оказывают давление на стенки пор оболочек и микротрещин в целлюлозных мицеллах. Волокна целлюлозы не теряют формы, но разрыхляются и в пространство между ними проникает вода, увеличивая межфибриллярные промежутки, что способствует увеличению площади апопласта, представляющего собой гидростатическую систему, обеспечивающую транспорт ионов. Ксиланаза катализирует гидролиз гемицеллюлозы. В результате происходит деструктуризация гемицеллюлоз, образующих экранирующий слой на поверхности целлюлозных микрофибрилл, не затрагивая целлюлозных волокон. Было изучено относительное содержание химических элементов в промывных водах после замачивания зерна пшеницы и тритикале в течение 12 часов, ржи в течение 16 часов с ферментными препаратами целлюлолитического действия в условиях режимов, оптимальных для действия ферментных систем. Установлено, что приоритетные загрязнители – кадмий, свинец, хром и никель под действием биокатализаторов в большей степени переходят в промывные воды, чем в варианте с замачиванием зерна в воде.


Таким образом, проведенные экспериментальные исследования позволили сформулировать концепцию механизма снижения содержания токсических элементов в зерновом сырье путем обработки биокатализаторами на основе целлюлаз, с осуществлением ферментативного гидролиза, приводящего к мацерации структур оболочек, деструктуризации и фрагментации полимеров, изменению пор, солюбилизации продуктов гидролиза и десорбции ионов.



<< предыдущая страница   следующая страница >>